1 Kaedah smear ialah kaedah membuat filem yang menyalut bahan secara seragam pada aslaid kaca. Bahan smear termasuk organisma bersel tunggal, alga kecil, darah, cecair kultur bakteria, tisu longgar haiwan dan tumbuhan, testis, anter, dsb.
Beri perhatian apabila mencalit:
(1) Gelongsor kaca mestilahbersih.
(2) Gelongsor kaca hendaklah rata.
(3) Salutan mestilah seragam. Cecair smear dijatuhkan ke kanan tengah slaid, dan ratakan dengan pisau pisau bedah atau pencungkil gigi.
(4) Salutan hendaklah nipis. Gunakan slaid lain sebagai penolak, dan tolak perlahan-lahan dari kanan ke kiri di sepanjang permukaan slaid di mana larutan smear dititiskan (sudut antara dua slaid hendaklah 30°-45°), dan sapukan lapisan nipis secara rata.
(5) Tetap. Untuk penetapan, kaedah fiksatif kimia atau kering (bakteria) boleh digunakan untuk penetapan.
(6) Mewarna. Methylene blue digunakan untuk bakteria, noda Wright digunakan untuk darah, dan kadangkala iodin boleh digunakan. Penyelesaian pencelupan harus meliputi seluruh permukaan yang dicat.
(7) Bilas. Rendam kering dengan kertas penyerap atau roti bakar kering.
(8) Tutup filem itu. Untuk penyimpanan jangka panjang, tutup slaid dengan gusi Kanada.
2. Kaedah tablet ialah kaedah membuat helaian dengan meletakkan bahan biologi di antara slaid kaca dan slip penutup dan mengenakan tekanan tertentu untuk memencarkan sel tisu.
3. Kaedah pemasangan ialah kaedah di mana bahan biologi dimeterai secara keseluruhan untuk membuat spesimen slaid. Kaedah ini boleh digunakan untuk membuat pelekap sementara atau kekal. Bahan untuk memuatkan kepingan termasuk: organisma kecil seperti Chlamydomonas, Spirogyra, Amoeba dan nematod; Hidra, epidermis daun tumbuhan; sayap, kaki, bahagian mulut serangga, sel epitelium mulut manusia, dsb.
Perhatian harus diberikan kepada penyediaan kaedah slaid:
(1) Apabila memegang slaid, ia hendaklah rata atau diletakkan di atas pelantar. Apabila menitiskan air, jumlah air hendaklah sesuai, supaya ia hanya ditutup oleh kaca penutup.
(2) Bahan hendaklah dibuka dengan jarum membedah atau pinset tanpa bertindih, dan diratakan pada satah yang sama.
(3) Apabila meletakkan kaca penutup, perlahan-lahan tutup titisan air dari satu sisi untuk mengelakkan gelembung udara daripada muncul.
(4) Apabila mengotorkan, letakkan setitik larutan pewarna pada satu sisikaca penutup, dan serap dari sisi lain dengan kertas penyerap untuk menjadikan spesimen di bawah kaca penutup berwarna sekata. Selepas mewarna, gunakan kaedah yang sama, titiskan setitik air, sedut larutan pewarna, dan amati di bawah mikroskop.
Masa siaran: Nov-22-2022